Патент РФ. 2003. № 2001128771

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Баратов А.Н., Пчелинцев В.А. Пожарная безопасность.– М.: изд-во АСВ, 1997.–176 с.

2. Безопасность жизнедеятельности: Методические указания по выполне­нию дипломного проекта/ Сост.: В.А. Бондарь, Р.Я. Дедеян, В.Г. Калы­гин; Под ред. Б.Г. Попова - М: МГУИЭ, 2000. - 24 с; ил.

3. Белова Н.В., Яковлева Н.С., Псурцева Н.В., Кияшко А.А. Продукция лакказ у базидиомицетов при фепментации в различных условиях // Успехи ммедицинской микологии.– Т.9.–М.: Национальная академия микологии. 2007. – с. 144-145.

4. Бирюков В.В. Основы промышленной биотехнологии.­ – М.: «КолосС» «Химия», 2004. 296 с.

5. Васильченко Л.Г., Хромоныгина В.В., Королева О.В., Ландесман Е.О., Гапоненко В.В., Ковалева Т.А., Козлов Ю.П., Рабинович М.Л. Потребление триазинового гербицида атразина лакказным и безлакказным вариантами почвенного гриба Mycelia sterilia ИНБИ 2-26// Прикладная биохимия и микробиология. –2002. – Т. 38. – № 5. – С. 534-539.

6. Воробьева Г.Я., Коррозионная стойкость материалов в агрессивных средах химических производств. – М.: Химия, 1875, 816с.

7. Гаврилова В.П., Гусарова Л.А. Биологическое окисление базидиомицетами гидролизной последрожжевой бражки // Микол. и фитопатол.– 1986. – т. 20. – Вып. 4. – С. 285-288.

8. Гаврилова В.П., Королева О.В. Перспективы промышленного получения специфических белков и биологических катализаторов их базидиомицетов // Современная микология в России: Тез. докл. I Съезда микологов России. – М., 2002. – С. 293-294.

9. Горбатова О.Н., Королёва О.В., Ландесман Е.О., Степанова Е.В., Жердев А.В. Индукция биосинтеза лакказы как способ увеличения потенциала детоксификации базидиомицетами //Прикладная биохимия и микробиология. – 2006. – том 42. –№ 4. – С. 468-474.

10. Горшина Е.С., Русинова Т.В., Бирюков В.В., Морозова О.В., Шлеев С.В., Ярополов А.И. Динамика оксидазной активности в процессе культивирования базадиального гриба рода Trametes Fr. // Прикладная биохимия и микробиология. – 2006.- №6.-С.638-644

11. Грачева И.М., Кривова А.Ю. Технология ферментных препаратов. – 3-е изд., перераб. и доп. М.: Изд-во «Элевар», 2000, 512с.

12. Даниляк Н.И., Семичаевский В.Д., Трутнева И.А.. Ферментные системы высших базидиомицетов – Киев: Наукова думка, 1989. – 279с.

13. Имммобилизованные клетки и ферменты. Методы: Пр. с англ./ Под. Ред. Дж. Вудворда. – М.: Мир, 1988. – 215с., ил.

14. Калунянц К.А., Голгер Л.И. Микробные ферментные препараты.- М.: Пищевая промышленность, 1979.- 304с.

15. Калыгин В.Г., Бондарь В.А., Дедеян Р.Я. Безопасность жизнедеятельности. Промышленная безопасность, безопасность в техногенных чрезвычайных ситуациях. Курс лекций. – М.: Химия, КолосС, 2006г. – 520 с.: ил.

16. Клинов И.Я., Химическое оборудование в коррозионно-стойком исполнении. – М.: Машиностроение, 1977, 589с.

17. Королева О.В., Степанова Е.В., Гаврилова В.П., Яковлева Н.С., Ландесман Е.О., Ярополов А.И. Оптимизация условий глубинного культивирования базидиомицета Coriolus hirsutus - продуцента внеклеточной лакказы// Прикладная биохимия и микробиология. –2000. – т. 36. – № 1.– С. 30-36.

18. Королева О.В., Степанова Е.В., Ландесман Е.О., Баронина Т.С., Чеканова С.А., Телегин Ю.А., Сенькина З.Е., Гаевский В.Ф., Смалько П.Л. Ферментативный метод определения. В сборнике докладов семинара " Современные проблемы виноделия" на VI Международном профессиональном конкурсе вин " Лучшее шампанское, вино и коньяк года". Москва, 18-22 ноября 2002 г. – С. 25-30.

19. Королева О.В., Степанова Е.В., Ландесман Е.О., Васильченко Л.Г., Хромоныгина В.В., Жердев А.В., Рабинович М.Л. Иммуноферментный анализ разложения гербицида почвенными и древоразрушающими грибами// Прикладная биохимия и микробиология. – 2002. – том 38, – №4. – С. 413-418.

20. Лабораторный регламент процесса получения ферментного препарата лакказа. ПКФ «Бигор», М.

21. Морозова Г.Р., Высоцкий В.Г., Сафонова Н.В., Мамаева Е.М. Промышленное получение мицелия высших грибов. Обзор.ОНТИТЭИмикробиопром, Москва, 1978. с. 57- 370 экз.

22. Морозова, О.В. Лакказы базидиальных грибов, лакказа-медиаторные системы и возможности их использования [Текст]: дис. … канд. хим. наук: 03.00.04: защищена 5.12.06. М., 2006.

23. Нормы пожарной безопасности НПБ 105-03 «Определение категорий помещений, зданий и наружных установок по взрывопожарной и пожарной опасности».2003

24. Озолиня Н.Р., В.Н. Сергеева, Ц.Л. Абрамович. Возможности биотрансформации отходов целлюлозо-бумажной промышленности / Превращение древесины при энзиматическом и микробиологическом воздействиях. – Рига, 1988.– С. 137-141.

25. Охрана труда в микробиологической промышленности. М: Лесная про­мышленность, 1972г.

Патент РФ. 2003. № 2001128771

27. Патент РФ. 2008. № 2315102

28. Правила устройства электроустановок (ПУЭ). – М., Энергоатомиздат, 2003

29. Решетникова И.А. Деструкция лигнина ксилотрофными макромицетами. Накопление селена и франкционирование его изотопов микроорганизмами.- М.: 1997 – 197с., 83 ил., 37 таб.

30. Русинова, Т.В. Разработка технологии биосинтеза фермента лакказы базидиальными грибами рода Trametes[Текст]: дис. … канд. тех. наук: 03.00.23: защищена 29.05.07: утв.13.07.07/Русинова Татьяна Витальевна.- М., 2007 – 141с.

31. СанПиН 2.2.1/2.2.1.1200-03 Санитарно-защитные зоны и санитарная классификация предприятий, сооружений и иных объектов. Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы.

32. Скрябин Г.К., Головлева Л.А. Использование микроорганизмов в органическом синтезе.– М.: Наука, 1976.–336с.

33. Техника безопасности в микробиологической промышленности под ред. В.М Цыгальницкого, изд.З-е переработанное и дополненное. М, Лесная промышленность, 1988г.

34. Туфанов Д.Г. Коррозионная стойкость нержавеющих сталей и чистых металлов. М.: Металлургия, 1953г, 352с.

35. Химия: Энциклопедия / Под ред. И. Л. Кнунянц. – М.: Большая Российская энциклопедия, 2003. – 972 с.

36. Черных А.М., Леонтьевский А.А., Головлёва Л.А. Новые приемы повышения выхода лакказы гриба Panus tigrinus// Прикладная биохимия и микробиология. - 2005. - том 41, № 5, - с. 578-581

37. Baldrian P. Fungal laccase – occurrens and prorerties // FEMS Microbiol Rev 30 – 2006. – р.215-242.

38. Bauer C.G., Kuhn A., Gajovic N., Skorobogat'ko (Koroleva) O., Holt P.-J., Bruce N.C., Makower A., Lowe C.R., Scheller F.W. New enzyme sensors for morphine and codeine based on morphine dehydrogenase and laccase// Fresenius J. Anal. Chem., –1999. – vol. 364. – p. 179-183.

39. Bayramoğ lu G, Bektaş S, Arica MY. Biosorption of heavy metal ions on immobilized white-rot fungus Trametes versicolor// J Hazard Mater. – 2003. - 101(3). –р. 285-300.

40. Bumpus John A., Tien Ming, Wright David, Aust Steven D. Oxidation of persistent environmental pollutants by a white rot fungus// Sience. –1985. – V.228. – № 4706. – р. 1434-1436.

41. Cabana H, Jones JP, Agathos SN. Preparation and characterization of cross-linked laccase aggregates and their application to the elimination of endocrine disrupting chemicals.

42. Chairattanamanokorn P, Imai T, Kondo R, Sekine M, Higuchi T, Ukita M. Decolorization of alcohol distillery wastewater by thermotolerant white-rot fungi// Prikl Biokhim Mikrobiol. – 2005. - 41(6). - р. 662-7.

43. D'Annibale A, Crestini C, Vinciguerra V, Sermanni GG. The biodegradation of recalcitrant effluents from an olive mill by a white-rot fungus.J Biotechnol. 1998 May 13; 61(3): 209-18.

44. Ehlers G.A., Rose P.D. Immobilized white-rot fungal biodegradation of phenol and chlorinated phenol in trickling packed-bed reactors by employing sequencing batch operation// Bioresour Technol. – 2005. - 96(11). – р.1264-75.

45. Eichlerova I, Homolka L, Lisa L, Nerud F. The influence of extracellular H2O2 production on decolorization ability in Fungi // J Basic Microbiol. –2006. –46(6). – р. 449-55.

46. Enayatzamir K, Alikhani HA, Yakhchali B, Tabandeh F, Rodrí guez-Couto S. Decolouration of azo dyes by Phanerochaete chrysosporium immobilised into alginate beads // Environ Sci Pollut Res Int. – 2010. -17(1). – р. 145-53.

47. Fahr K, Wetzstein HG, Grey R, Schlosser D. Degradation of 2, 4-dichlorophenol and pentachlorophenol by two brown rot fungi// FEMS Microbiol Lett. –1999. –Jun 1. –175(1). – р. 127-32.

48. Font X, Caminal G, Gabarrell X, Vicent T. Treatment of toxic industrial wastewater in fluidized and fixed-bed batch reactors with Trametes versicolor: influence of immobilisation. Environ Technol. 2006 Aug; 27(8): 845-54.

49. Franzoi Ana Cristina, Iolanda Cruz Vieira, Jairton Dupont, Carla Weber Scheeren and Luciane Franç a de Oliveira. Biosensor for luteolin based on silver or gold nanoparticles in ionic liquid and laccase immobilized in chitosan modified with cyanuric chloride. Analyst, 2009, 134, 2320 - 2328, DOI: 10.1039/b911952c

50. Hao J, Song F, Huang F, Yang C, Zhang Z, Zheng Y, Tian X. Production of laccase by a newly isolated deuteromycete fungus Pestalotiopsis sp. and its decolorization of azo dye //J Ind Microbiol Biotechnol. –2007. – Mar.–34(3). – р. 233-40. Epub 2006 Dec 15.

51. Iqbal M, Saeed A, Edyvean RG, O'Sullivan B, Styring P. Production of fungal biomass immobilized loofa sponge (FBILS)-discs for the removal of heavy metal ions and chlorinated compounds from aqueous solution// Biotechnol Lett. – 2005. -27(17). –р. 1319-23.

52. Klis M, Karbarz M, Stojek Z, Rogalski J, Bilewicz R. Thermoresponsive poly(N-isopropylacrylamide) gel for immobilization of laccase on indium tin oxide electrodes. J Phys Chem B. 2009 Apr 30; 113(17): 6062-7.

53. Krishna P. Katuria,,, S. Venkata Mohanb, S. Sridharc, B.R. Patid and P.N. Sarmab. Laccase-membrane reactors for decolorization of an acid azo dye in aqueous phase: Process optimization.

54. Kunamneni A., Ghazi I., Camarero S., Ballesteros A., Plou F.J., Alcade M. Decolorization of synthetic dyes by laccase immobilized on epoxy-activated carriers// Process Biochem. – 2008, -43. – р. 169-178.

55. Koroleva O.V., Stepanova E.V., Landesman E.O., Vasilchenko L.G., Khromonygina V.V., Zherdev A.V., Rabinovich M.L. In vitro degradation of the herbicide atrazine by soil and wood decay fungi controlled through ELISA technique// Toxicological and Environmental Chemistry. –2001. – vol. 80. – N 3-4. – p. 175-188.

56. Leontievsky A.A., Myasoedova NM, Baskunov BP, Evans CS, Golovleva LA. Transformation of 2, 4, 6-trichlorophenol by the white-rot fungi Panus tigrinus and Coriolus versicolor // Biodegradation. –2000. –№ 11. – p. 331-340.

57. Livernoche D, Jurasek L, Desrochers M, Dorica J, Veliky IA. Removal of color from kraft mill wastewaters with cultures of white-rot fungi and with immobilized mycelium of Coriolus versicolor. Biotechnol Bioeng. 1983 Aug; 25(8): 2055-65.

58. Lorenzo M, Moldes D, Rodriguez Couto S, Sanroman A. Improving laccase production by employing different lignocellulosic wastes in submerged cultures of Trametes versicolor// Bioresour Technol. –2002. – Apr. – 82(2). – р.109-13.

59. Lu Y., Yan L., Wang Y., Zhou S., Fu J., Zhang J. Biodegradation of phenolic compounds from coking wastewater by immobilized white rot fungus Phanerochaete chrysosporium// J Hazard Mater. – 2009. - 165(1-3). – р. 1091-7.

60. Marco-Urrea E, Gabarrell X, Sarra M, Caminal G, Vicent T, Reddy CA. Novel aerobic perchloroethylene degradation by the white-rot fungus Trametes versicolor//Environ Sci Technol. –2006. –Dec 15. –40(24). – р. 7796-802.

61. Ohmomo S., Itoh N., Watanabe Y., Kaneko Y., Tozawa Y., Ueda K.. Contunuous decolorization of molasses waste water with mycelia of Coriolus versicolof Ps4a // Agric. biol. chem. – 1985. – vol. 49.– no 9.– Sep.– p. 2552-2555.

62. Ortega-Clemente A., Caffarel-Mé ndez S., Ponce-Noyola M.T., Barrera-Có rtes J., Poggi-Varaldo H.M., 2009. Fungal post-treatment of pulp mill effluents for the removal of recalcitrant pollutants// Bioresour Technol. – 2009. - 100(6). – р.1885-94.

63. Petre M, Teodorescu ME, Zarnea G, Adrian P, Gheorghiu E, Gheordunescu V. Microbial degradation of cellulose wastes in continuous bioreactors// Meded Rijksuniv Gent Fak Landbouwkd Toegep Biol Wet. – 2001. - 66(3a). – р. 195-8.

64. Rekuć A, Kruczkiewicz P, Jastrzembska B, Liesiene J, Peczyń ska-Czoch W, Bryjak J. Laccase immobilization on the tailored cellulose-based Granocel carriers. Int J Biol Macromol. 2008 Mar 1; 42(2): 208-15. Epub 2007 Sep 29.

65. Rodriguez S, Fernandez M, Bermudez RC, Morris H. Treatment of coloured industrial effluents with Pleurotus spp // Rev Iberoam Micol. –2003. –Dec. – 20(4). – р. 164-8.

66. Rodrí guez Couto S, Sanromá n M.A., Hofer D., Gü bitz G.M. Stainless steel sponge: a novel carrier for the immobilisation of the white-rot fungus Trametes hirsuta for decolourization of textile dyes// Biores. Technol. – 2004. – 95. – р. 67-72.

67. Roman-Gusetu G, Waldron KC, Rochefort D. Development of an enzymatic microreactor based on microencapsulated laccase with off-line capillary electrophoresis for measurement of oxidation reactions. J Chromatogr A. 2009 Nov 20; 1216(47): 8270-6. Epub 2009 Aug 31.

68. Salony, Mishra S, Bisaria VS. Production and characterization of laccase from Cyathus bulleri and its use in decolourization of recalcitrant textile dyes // Appl Microbiol Biotechnol. –2006. – Aug. – 71(5). – р. 646-53.

69. Shim SS, Kawamoto K. Enzyme production activity of Phanerochaete chrysosporium and degradation of pentachlorophenol in a bioreactor. Water Res. 2002 Nov; 36(18): 4445-54.

70. Susla M, Novotný C, Svobodová K. The implication of Dichomitus squalens laccase isoenzymes in dye decolorization by immobilized fungal cultures// Bioresour Technol. – 2007. - 98(11). – р. 2109-15.

71. Trupkin S, Levin L, Forchiassin F, Viale A. Optimization of a culture medium for ligninolytic enzyme production and synthetic dye decolorization using response surface methodology // J Ind Microbiol Biotechnol. – 2003. –Dec. – 30(12). – р. 682-90.

72. Turner MB, Spear SK, Holbrey JD, Daly DT, Rogers RD. Ionic liquid-reconstituted cellulose composites as solid support matrices for biocatalyst immobilization. Biomacromolecules. 2005 Sep-Oct; 6(5): 2497-502.

73. Wang P, Fan X, Cui L, Wang Q, Zhou A. Decolorization of reactive dyes by laccase immobilized in alginate/gelatin blent with PEG. J Environ Sci (China). 2008; 20(12): 1519-22.

74. Ziegenhagen D, Hofrichter M. A simple and rapid method to gain high amounts of manganese peroxidase with immobilized mycelium of the agaric white-rot fungus Clitocybula dusenii. Appl Microbiol Biotechnol. 2000 May; 53(5): 553-7.