Измерение первичной продукции

Чистую продукцию удобно выражать в граммах ассимилирован­ного углерода, в сухом весе или в энергетическом эквиваленте сухого веса. Всеми этими показателями пользуются попеременно. Содержание энергии в каком-либо органическом соединении зависит, прежде всего, от содержания в нем углерода и азота. Содержание уг­лерода по весу в большинстве растительных тканей близко к его со­держанию в глюкозе, т. е. к 40%. Когда в растениях сахара превра­щаются в жиры и масла, кислород отщепляется от их молекул, так что относительное содержание углерода возрастает. Например, трипальмитинглицерид (С₅₁Н₉₈С₆) содержит 76% углерода по весу. Содержание энергии на 1 г в жирах и маслах более чем вдвое превышает ее содер­жание в сахарах, а поэтому они очень часто используются растениями и животными для запасания энергии.

Соединение двуокиси углерода и воды в процессе фотосинтеза тре­бует затраты 9, 3 ккал энергии на каждый грамм ассимилированного углерода. Поэтому полное окисление какого-либо углеродсодержащего соединения до двуокиси углерода и воды должно было бы сопровож­даться высвобождением ровно 9, 3 ккал на 1 г окисленного углерода. Практически вследствие биохимических перестроек, с которыми свя­зано образование большинства сложных органических соединений, ко­личества энергии оказываются несколько иными. Принято считать, что при окислении 1 г угле­рода (сахаров, крахмала, целлюлозы) высвобождается 4, 2 ккал энер­гии, 1 г белка—5, 7 ккал, а 1 г жира—9, 5 ккал.

Общее уравнение продукции допускает несколько возможных ме­тодов измерения первичной продукции естественных местообитаний. Поглощение двуокиси углерода и минеральных питательных ве­ществ, выделение кислорода - все эти величины пропорциональны продукции. Для измерения поглощения двуокиси углерода и продук­ции кислорода и органического вещества существуют надежные методы.

Первичную продукцию наземных экосистем обычно оцениваютпогодовому приросту растительной биомассы (чистая продукция). Для того чтобы определить прирост за год, в конце вегетационного сезона растения срезают, высушивают и взвешивают. Этот метод сбора уро­жая обычно используют при определении биомассы культурных и ди­корастущих растений в умеренных областях, где вся надземная часть у большинства растений ежегодно отмирает. Поскольку рост корней обычно не учитывается (из почв большинства типов корни извлекать трудно), урожай измеряет чистую годовую наземную продуктивность, которая чаще всего и используется в качестве основы для сравнения продуктивности наземных сообществ.

Метод сбора урожая сталкивается с некоторыми трудностями. Часть первичной продукции поедают растительноядные животные. Рост корней, как только что отмечалось, измерить трудно, хотя корне­вые системы однолетних растений иногда удается отделить от почвы путем длительного отмывания. Однако у многолетников рост корней продолжается из года в год, так что их биомасса представляет собой результат многолетнего роста. Трудности измерения, создаваемые в луговых местообитаниях ростом корней, еще больше увеличиваются в лесах вследствие роста ветвей и стволов деревьев. Сбор листового опада и обрезка свежих побегов дают возможность оценить продукцию лишь частично. Годовой прирост деревянистых частей часто вычисляют, определяя отношение окружности ствола к общей биомассе и измеряя затем годовые приросты живых деревьев. Для оценки общей биомассы срубают ряд деревьев увеличивающегося размера, отделяют стволы от ветвей, а иногда и от корней, после чего сжигают все эти части по отдельности в больших печах и взвешивают золу. Годо­вой прирост окружности живых де­ревьев можно затем перевести в увеличение общего веса. Для пол­ной оценки продукции к получен­ной величине прибавляют прирост листьев, цветков и плодов, т. е. ча­стей, которые возобновляются каж­дый год.

Специфической чертой продукционного процесса в водо­емах служит то, что в образовании первичной продукции их большое значение имеет планктон, биомасса которого, как правило, во много раз меньше годовой продукции. Поэтому ни биомасса планктона в какой-либо момент года, например во время его максимального развития, ни средняя биомасса за год не могут служить мерой первичной продукции

В природе одновременно происходят два противоположных процесса - построение и разрушение органических веществ. Новообразование органических веществ в темноте прекращается, следовательно, прекращается и потребление углекислоты из окружающей среды и выделение в среду эквивалентного количества кисло­рода. Процессы же дыхания, т. е. потребление кислорода и выделение углекислоты, в темноте идут с той же скоростью, что и на свету. Поэтому, сравнив результаты жизнедеятель­ности водных сообществ на свету и в темноте, можно рассчи­тать величину первичной продукции, а в известных случаях и деструкции в водоемах.

О процессах построения и деструкции в принципе можно судить по нескольким различным показателям, например, по скорости потребления кислорода, выделения углекислоты, изме­нению рН, накоплению продуктов фотосинтеза и пр. В прак­тике исследований в подавляющем большинстве случаев при­бегали к измерениям содержания в воде растворенного кислорода. Следует сказать, что скорость потребления кислорода служит наиболее распространенным показателем интенсивности обмена водных организмов и скорости минерализации органических веществ, или скорости деструкции.

Наконец, биомасса водных организмов, пропорциональная количеству органических веществ, может быть выражена экви­валентным ей количеством кислорода, потребного для полного окисления. Биомасса, выраженная в единицах кислорода, оказывается не­посредственно сравнимой с результатами измерений интенсивности фотосинтеза (первичной продукции) и дыхания (деструкции). Таким образом, есть основания выделить кислородный метод определения величины первичной продукции в водоемах.

При прослеживании круговорота углерода и изучении не­которых других вопросов можно было бы отдать предпочтение углекислоте в качестве единицы измерения, но для энергетического рассмотрения биотического круговорота углекислота как единица измерения непригодна, так как энергетический экви­валент ее в несравненно большей мере изменяется в зависимо­сти от химического состава вещества. Известно, что для безазотистого дыхательного коэффициента (ДК) энергетические эквиваленты О₂ и СО₂ составляют следующее число калорий на 1 мл.

Таблица

Для кислорода энергетический эквивалент при ДК=0, 70 отклоняется всего на 7% от его значения при ДК=1, 0, в то время как для углекислоты соответствующая разность состав­ляет 33%.

Для определения величин первичной продукции планктона могут быть использованы наблюдения в дневное и ночное вре­мя в открытой воде водоемов, т. е. расчеты величин первичной продукции по суточному ходу содержания кислорода и угле­кислоты, или же наблюдения за результатами жизнедеятель­ности планктона в воде, заключенной в незатемненные и за­темненные сосуды.

Наибольшее распространение получил по­следний способ, который может быть обозначен как метод склянок.

По истечении известного срока экспозиции, например 24 ча­сов, в незатемненном сосуде должно содержаться больше про­дуктов фотосинтеза и растворенного в воде кислорода и мень­ше углекислоты, чем в затемненном. Очевидно, что разности в содержании кислорода или углекислоты строго пропорциональ­ны интенсивности фотосинтеза планктона. Таким образом, об интенсивности фотосинтеза планктона можно судить, пользуясь разными критериями. Соответственно с этим можно различить по меньшей мере три варианта метода склянок. Из них первый технически наиболее простой и наиболее распространенный кислородный вариант.

Техника применения метода склянок проста. В этом суще­ственное достоинство метода, который может быть использо­ван, и в экспедиционных условиях. Склянки должны быть из белого стекла и иметь притертые пробки. Наиболее удобны склянки вместимостью 60— 160 мл. При таком объеме три склянки («контрольная» - для определения начального содержания кислорода, затемненная и незатемненная) могут быть заполнены из одного литрового батометра. С помощью склянок такого размера сделана боль­шая часть наблюдений на разных водоемах, и поэтому такая вместимость их желательна для стандартизации метода.

При всех наблюдениях методом склянок, особенно при стационарных работах, рекомендуется на каждый горизонт уста­навливать две светлые и две затемненные склянки, как это и практиковалось почти всеми авторами.

Когда наблюдения ведутся с помощью большого числа скля­нок, то при определении содержания кислорода удобно титро­вать не все содержимое склянки, а некоторый объем, отобран­ный с помощью пипетки после тщательного перемешивания раствора. При этом возможно повысить точность анализа путем повторного ти­трования. Например, из склянки в 120 мл можно дважды отобрать по 50 мл. При этом способе существенно облегчаются расчеты и отпадает необходимость точной калибровки склянок, но лишь в случае, когда все склянки имеют примерно один и тот же объем.

Склянки с пробами, отобранными на нужной глубине, экспонируют­ся на той же глубине. За исключением специальных наблюдений, срок пребывания склянок в водоеме должен быть равен 24 часам. На протяже­нии суток начинаются и заканчиваются циклические изменения освещения и других условий.

Расчет первичной продукции по кислородной модификации метода склянок осуществляется следующим образом. Начальное содержание О₂ в склянке перед экспонированием составляло V₁, после экспозиции в светлой склянке содержание О₂ было равно V_с, в темной склянке – V_т. Время экспозиции t = 24 ч.

Первичную продукцию (мг О₂/л.ч.) вычисляют по формулам:

валовая продукция: Р_вал = (V_с - V_т )/ t

чистая продукция: Р_чис = (V_с – V₁ )/ t

деструкция: Д = (V₁ – V_т ) /t

В данном случае первичная продукция и деструкция выражены в единицах кислорода. Первичная продукция может быть выражена в разных взаимоэквивалентных единицах. При переходе от одних единиц к другим принято исходить из следующих предпосылок: оксикалорийный коэффициент для органического вещества (ОВ) смешанного состава равен 3, 4 кал/мг О₂; в органическом веществе содержится 46% углерода; ассимиляционный коэффициент (АК) равен 1, 12, а дыхательный коэффициент (ДК) равен 0, 89. При этих условиях получаем следующие переходные коэффициенты: 3, 2 мгО/мгС, 10, 6 кал/мгС, 0, 69 мгОВ/мгО₂, 2, 15 мгОВ/мгС. Если АК = 1, 25 при ДК = 0, 80, то коэффициент перехода от мгО₂ к мгС составит 0, 30, от мгС к калориям – 11, 3.

Радиоуглеродную модификацию метода склянок для опре­деления первичной продукции морского планктона впервые применил Стеман-Нильсен во время работ дат­ской морской экспедиции на судне «Галатея» (по Винберг, 1960).

Сущность предложенного Стеман-Нильсеном метода сво­дится к следующему.

К заключенной в незатемненную склянку пробе добавляется известное количество меченой углекислоты в виде раствора карбоната или бикарбоната. Стеман-Нильсен ввел в практику исследований удобный прием предварительно­го приготовления ампул, содержащих нужные дозы раствора бикарбоната с меченым углеродом. Им применялись серии ам­пул, содержащих от 0, 8 до 8 мкСu.

После некоторого срока экспозиции проба профильтровывается через мембранный фильтр. Измерив активность фильтра с осевшим на нем планктоном (г) и зная общую начальную активность внесенного радиоуглерода (R), находят отношение этих величин г/R. Принимается, что количество ассимилированной углекислоты находится в том же соотношении с общим количеством ее во взятом объеме воды (с). Определив последнюю величину гидрохимическим путем, легко рассчитать искомое количество ассимилированной углекислоты (А). Очевидно, А = r c/ R

Однако в такие расчеты приходится вносить некоторые по­правки. Прежде всего допущение об одинаковой скорости ассимиляции С¹² и С¹⁴ заведомо не совсем верно. Известно, что С¹⁴ ассимилируется с несколько меньшей скоростью. Это вы­зывает необходимость поправки на так называемую дискрими­нацию С¹⁴. Стеман-Нильсен считает, что меньшая скорость ассимиляции С¹⁴ компенсируется поправкой +5%.

На результаты измерений методом меченого углерода может оказать влияние также темновая фиксация углекислоты, но она обычно не превосходит 1 - 2% от скорости ассимиляции на свету. Однако в загрязненных водах, где много бактерий, она может приобретать исключительно большое зна­чение.

Наиболее слабым местом метода является то, что с его помощью фактически измеряется не все количество ассимилированного радиоактивного углерода. Некоторая часть ассимилированных атомов во время опыта принимает участие в дыхании и вновь уходит во внешнюю среду в составе выделенных при дыхании молекул СО₂. Какая доля от ассимилированных атомов С¹⁴ будет вновь отдана окружающей клетки среде, зависит от многих условий, в частности, и от продолжительности опытов. В длительных опытах вся выделяемая npи дыхании углекислота идентична ассимилированной; в этих условиях этим методом измеряется не валовая, а чистая продукция, т. е. не истинный, а видимый фотосинтез. Полагают, что при кратковременных опытах в среднем 60% выде­ляемой при дыхании углекислоты приходится за счет ассими­лированной при фотосинтезе и что в условиях оптимального освещения интенсивность дыхания составляет 10% от интенсивности фотосинтеза. Тогда для по­лучения истинного фотосинтеза (валовой продукции) следует внести поправку +6%. Вместе с поправками на дискримина­цию С¹⁴ и на темновую фиксацию углекислоты (-1%) - это со­ставит (+5 - 1+6) =10%. Последнюю величину (10%) Сте­ман-Нильсен вводит во все расчеты первичной продукции планктона. Но та­кая величина поправки годится только для условий, при ко­торых дыхание составляет 10% от фотосинтеза. Когда дыхание составляет 25% от фотосинтеза, поправка равна 20%, при 50% поправка будет 50% и т.д.

Таким образом, в различных условиях поправка должна быть разной, так что любое принятое постоянное зна­чение ее будет в значительной мере произвольным. В связи с этим Джитс предложил отказаться от внесения поправ­ки, ограничиваясь точными указаниями, при каких условиях (сроки экспозиции, освещение и пр.) получены соответствую­щие данные.

Стеман-Нильсен отмечает, что при низких интенсивностях света поправка особенно велика. Поэтому он считает, что метод С¹⁴ не пригоден для измерений интенсивности фотосинтеза при очень малых интенсивностях света.

Наличие хлорофилла в клетках является необходимым условием фотосинте­за. Большое число работ показывает закономерную связь между количест­вом хлорофилла растительных клеток и их продукцией и биомассой. Хлорофилльный метод измерения первичной продукции фитопланктона является весьма приближенным и его использование рекомендуется только в том случае, если невозможно измерение скляноч­ным методом. Ориентировочный расчет продукции и биомассы фитопланкто­на по концентрации хлорофилла " а" проводят исходя из того, что хлоро­филл " а" составляет 2, 5 % сухой биомассы или 6, 75% содержания органи­ческого углерода. Содержание хлорофилла " а" определяют фотомет­рическими и спектрофотометрическими методами.

X. Одум (Н. Оdum) определял продукцию в сообществе целой реки, сравнивая изменение содержания кислорода в речной воде в дневное и ночное время и внося поправки на обмен кислородом между рекой и атмосферой. Комбинируя метод Одума с методом светлых и темных бутылей и с обычными методами сбора урожая (для тех мест, где растут крупные водоросли), можно довольно точно измерить продукцию в водных сообществах.

Для измерения фотосинтеза в наземных экосистемах удобнее ис­пользовать обмен двуокиси углерода, чем обмен кислорода, так как двуокиси углерода в атмосфере содержится меньше. Небольшие изме­нения содержания двуокиси углерода измерить относительно легко (в атмосфере содержится всего 0, 03% СО₂), и утечки из камер для взятия проб не порождают серьезных ошибок. Метод измерения про­дукции по двуокиси углерода сходен с методом светлых и темных склянок. Часть местообитания или даже отдельное растение заключают в воздухонепроницаемую камеру и сравнивают уменьшение содержа­ния СО₂ в течение дня с его повышением (за счет одного только ды­хания) ночью. Этот метод позволяет довольно точно измерять общую продукцию.

Использование радиоактивного углерода, в частности изотопа ¹⁴С, представляет собой модификацию метода измерения продуктивности, основанную на газообмене. Когда в воздухонепроницаемую камеру добавляют известное количество радиоактивного углерода в форме СО₂, растения ассимилируют радиоактивные атомы углерода в такой же пропорции, в какой они содержатся в воздухе камеры. Ско­рость фиксации углерода вычисляют, разделяя количество радиоактив­ного углерода, содержащееся в растении, на долю радиоактивной СО₂ в камере в начале эксперимента. Таким образом, если растение асси­милирует 10 мг ¹⁴С за 1 ч, а доля ¹⁴СО₂ в камере равна 5%, то можно вычислить, что растение ассимилирует углерод со скоростью 200 мг/ч (10: 0, 05). В процессе дыхания растение в конечном счете снова выде­ляет часть ассимилированного углерода в воздух в виде СО₂, которую оно может ассимилировать вторично. Измеряя поглощение радиоактив­ного углерода на протяжении 1-3 ч, можно получить надежную оцен­ку общей продуктивности. По прошествии одного-двух дней поглоще­ние и выделение радиоактивного углерода приближается к стационар­ному уровню и получаемые оценки скорее относятся к чистой, нежели к общей продукции.

Помимо С0₂ и воды, для синтеза органических соединений растения используют и другие вещества. Исчезновение из водных местообитаний растворенных нитратов и фосфатов может иногда служить относитель­ной мерой чистой продукции, но только при определенных условиях: рост должен происходить быстро и растения должны превращать неорганические питательные вещества в биомассу гораздо быстрее, чем ве­щества эти становятся им доступными в результате разложения мерт­вых растений или смешивания с глубинными слоями воды. Когда про­цессы продукции и разложения уравновешиваются и устанавливается некий стационарный режим, то освобождение неорганических питатель­ных веществ при разложении происходит с такой же скоростью, как их ассимиляция при фотосинтезе, а поэтому концентрация в среде рас­творенных питательных веществ не изменяется. Кроме того, следует иметь в виду, что накопление питательных веществ в растениях не обя­зательно связано какой-то постоянной зависимостью со скоростью про­дукции. Известно, например, что водоросли поглощают больше фосфора при высоком содержании в среде растворенных фосфатов, чем при их недостатке. А иногда растворенные минеральные вещества выделяют­ся растениями в среду. Многие физические и химические процессы, в частности эрозия, апвеллинг и осаждение, также оказывают влияние на содержание питательных веществ в водных системах. Надежные оценки продуктивности по исчезновению из среды неорганических пи­тательных веществ можно получить только в период «цветения» водорослей, наступающий в морях и озерах умеренной и арктической зон вслед за зимним периодом покоя..

Наконец, еще один метод оценки растительной продукции осно­ван на представлении о том, что интенсивность фотосинтеза опреде­ляется количеством хлорофилла. Морские водоросли ассимилируют максимум 3, 7 г углерода на 1 г хлорофилла в 1 ч. Общую продуктив­ность данного участка моря можно оценить, если известна концентра­ция хлорофилла на разной глубине и уменьшение освещенности с глу­биной. Хотя этот хлорофилловый метод менее точен, чем методы, основанные на газообмене, он тем не менее позволяет довольно просто и быстро оценивать продуктивность океанов и озер.

Сравнение нескольких методов измерения продуктивности водных экосистем было проведено на фьордовом озере Огак на Баффиновой Земле (Канада). Первичную продукцию измеряли в течение всего ве­гетационного сезона по поглощению радиоактивного углерода в свет­лых бутылях, помещенных в озеро, а кроме того, наблюдали за изме­нением концентрации хлорофилла, нитратов, фосфатов и растворенного кислорода (рис. 7.2). Суточная продуктивность озера быстро возраста­ла в начале лета, когда лед исчезал с поверхности и свет начинал про­никать в глубину воды. Концентрация хлорофилла возрастала парал­лельно возрастанию продуктивности, а концентрации нитратов и фос­фатов понижались на протяжении всего лета.

Концентрация растворенного кислорода повышалась весной вместе с вспышкой растительной ^продукции, но затем усиление дыхания зоопланктона затруднило выяв­ление какой-либо прямой зависимости между концентрацией кислорода и продукцией. Любопытно, что возрастание продукции, наблюдавшееся в конце лета, не зависело ни от одного из регистрируемых факторов.

Рис. 7.2. Соотношение между продуктивностью фитопланктона (/) к концентрацией хлорофилла (II), фосфатов (х1, 7) (III), нитратов (IV), кислорода (V) и зоопланктона (VI, произвольные единицы) в озере Огак на Баффиновой Земле.

СВЕТ И ФОТОСИНТЕЗ

Изучая работу фотосинтетического аппарата растения при разных интенсивностях света, физиологи растений установили влияние света на продуктивность.

При сравнительно низких освещенностях, обычно менее 25% освещенности в яркий солнечный день, интенсивность фотосинтеза прямо пропорциональна интенсивности света. Однако при более ярком свете фотосинтетические пигменты насыщаются и скорость фотосинтеза возрастает медленнее или остается на одном уровне. У многих водорослей на очень ярком свету фотосинтез замедляется, поскольку такой свет инактивирует или даже разрушает фотосинтетический аппарат.

Разные виды растений по-разному реагируют на освещенность. Так, у нескольких групп водорослей, образующих морской фитопланк­тон, фотосинтез достигает максимума при интенсивностях света от 0, 5 до 2 ккал (м² мин) (рис. 7.3). Вместе с тем, хотя в листьях дуба и ки­зила световое насыщение достигается при интенсивностях, сходных с теми, при которых наступает насыщение у водорослей, интенсивности выше насыщающих не подавляют фотосинтетическую активность у этих видов. У ладанной сосны световое насыщение достигается только в самые ясные дни.

Солнечный свет, падающий на поверхность листа, состоит из лучей фазной длины волны. Не все области спектра используются в процессе фотосинтеза. Зеленые листья содержат несколько пигментов, в частности хлорофиллы и каротиноиды, которые поглощают свет и используют его энергию.

Рис. 7.3. Зависимость между интенсивностьюсвета и фотосинтезом у зеленых водорос­лей (У), диатомовых водорослей (//), белого дуба (Л/), ладанной сосны (/V) и ки­зила (V).

Фиолетовый Синий Зеленый Желтый Оранжевый Красный

Длина волны, нм

Рис. Поглощение света различной длины волны (спектр поглощения) в пределах видимой части спектра.

А. Спектры поглощения двух светочувствительных пигментов—хлорофилла (Л и каротиноидов (Л). Б. Спектр поглощения целых листьев фасоли (/) и табака (//). В. Спектральное разложение све­та в тени леса из сахарного клена. Г. Относительная интенсивность фотосинтеза у мелководной аеленой водоросли Шуи (I) и у глубоководной красной водоросли РогрНуга (II) как функция об­ласти спектра. Красные водоросли фотосинтетически более активны в средней области спектра. Пигменты красных водорослей поглощают также синий и красный свет, но эти длины волн фотосинтетически относительно неактивны.

Каротиноиды поглощают свет главным образом в синей и зеленой областях спектра (рис., А) и отражают свет с длинами волн, соответствующими желтой и оран­жевой областям. Хлорофилл поглощает в красной и фиолетовой обла­стях и отражает лучи зеленой области, которые мы и воспринимаем как цвет листьев. Спектр поглощения листьев в целом (рис. Б) пример­но соответствует сумме спектров поглощения фотосинтетических пиг­ментов, однако значительное количество света в оранжевой области поглощают, очевидно, органические соединения, не участвующие в фо­тосинтезе. Листья разных видов растений имеют разные спектры погло­щения. Толстые, сильно пигментированные листья инжира поглощают 85% зеленого света (550 нм) — область спектра, в которой поглощение наименее интенсивно. Листья табака поглощают только 50% зеленого света. Вследствие такого избирательного поглощения света листьями свет, проникающий под полог леса, относительно богат в зеленой и ин­фракрасной, но беден в красно-оранжевой и голубой областях спектра (рис. В).

Хотя вода кажется бесцветной, она поглощает небольшое количе­ство света в красной области спектра и рассеивает голубой свет. Та­ким образом, вблизи нижней границы эвфотической зоны в океане преобладает зеленый свет. Фотосинтетические пигменты растений, жи­вущих на суше и на мелководьях, слабо поглощают в зеленой области спектра, однако некоторые глубоководные морские водоросли содержат красные пигменты (эритрины), сильно поглощающие зеленый свет (рис., Г). Эритрины в прямых лучах солнца окрашены в красный цвет, а поэтому эти водоросли называют красными. Способность крас­ных водорослей использовать зеленый свет позволяет им проникать на большую глубину, где не могут жить зеленые водоросли, содержащие такие же пигменты, как наземные растения.

ТЕМПЕРАТУРА И ФОТОСИНТЕЗ

В естественных системах температура обычно тесно коррелирует с интенсивностью света, но в лабораторных условиях, регулируя эти факторы, можно изучить влияние на фотосинтез каждого из них по отдельности. При низких освещенностях, когда лимитирующим фак­тором является свет, изменение температуры мало влияет на фотосин­тез, однако при умеренной освещенности интенсивность фотосинтеза возрастает в 2—5 раз при повышении температуры на каждые 10 °С.

Подобно большинству других физиологических функций, фотосин­тез достигает максимального уровня в пределах сравнительно узкого диапазона температур, а при дальнейшем повышении температуры его интенсивность быстро падает. Поскольку листья поглощают свет, их температура к середине дня может повыситься столь значительно, что фотосинтез существенно подавляется; поэтому фотосинтез достигает максимальной интенсивности утром, около 9 часов, затем интенсивность его снижается и.вновь повышается до пиковой около 17 часов (рис.). Как и следовало ожидать, температура, оптимальная для фотосинтеза, варьирует в зависимости от среды и составляет примерно от 16 °С для многих видов умеренного пояса до 38 °С для тропических растений.

Интенсивность света, ^/ ккал/м².мин

Температура, °С

Рис..

А. Зависимость интенсивности фотосинтеза от температуры листьев и интенсивности падающего света. Б. Изменение интенсивности фотосинтеза в течение дня; к полудню интенсивность резко падает, так как листья слишком сильно нагреваются.

Эффективность фотосинтеза - удобный показатель для выявления скорости образования первичной продукции в растительных формациях в естественных условиях. Она выражается в процентах падающего ви­димого излучения, которое превращается в чистую первичную продук­цию в течение тех сезонов, когда происходит активный фотосинтез. Если вода и питательные вещества имеются в достатке и не ограничи­вают растительную продукцию, то максимальная эффективность фо­тосинтеза составляет 1—2% доступной световой энергии.